комбинации температуры, влажности, слабых ЭМ-полей и т.д. В этом разделе, как и в случае
генераторов, мы рассматриваем только те сенсоры, которые были изготовлены в лаборатории,
приобретены или протестированы в процессе совместных экспериментов — то есть те, с
которыми происходила проверка работоспособности. В дальнейших разделах будут
рассмотрены три биосенсора (макро- и микробиологические процессы, фитосенсоры),
четыре жидкостных сенсора (DC- и АС-кондуктометрия, ЭДС- и pH-потенциометрия), три
твердотельных сенсора (полупроводники и пассивные радиокомпоненты), полевой сенсор
(ИГА-1) и датчики на основе фазовых переходов. Как видно, существует достаточное
количество сенсоров, способных регистрировать «высокопроникающее» излучение.
Под биологическими сенсорами в контексте «макробиологических тестов»
подразумеваются процессы морфогенеза при прорастании зёрен. Этот тест является широко
распространённым методом анализа различных воздействий [476; 477]. Можно использовать
зёрна тритикале, пшеницы, кукурузы, томатов, перца и т.д. В лаборатории используется в
основном пшеница. В качестве результата оцениваются несколько параметров, такие как
всходимость, длина побегов, длина корней, сухая биомасса и т.д. Наиболее
распространённым параметром является всходимость, поэтому этот тест иногда называется
тестом на всходимость. Преимущество этого метода заключается в его простоте, однако для
прорастания зёрен необходимо время — от 3 до 7 дней, поэтому он не всегда подходит в тех
ситуациях, когда нужно получить быстрый результат.
Приведём пример результатов теста для пшеницы. Оценивалась всходимость при t=144-
160 часов как соотношение среднего значения эксперимента — воздействия светодиодного
генератора с пенициллиновой матрицей, заключённого в заземлённый металлический
контейнер, — к среднему значению контроля. Пенициллиновая матрица включена в тест,
поскольку именно для неё было получено большое количество результатов в локальных и
нелокальных экспериментах [423; 475] (см. больше в главе, посвящённой ПИД-эффекту).
Количество зёрен в каждом контейнере — 200 шт., тест повторялся 3 раза. Были получены
следующие результаты для контроля — 94,82,88% и для опыта 98,96,93% соответственно
(см. пример на рис. 82).
Систематическая погрешность этого теста зависит от нескольких факторов: а) от
строгости выдерживания равных температурных, световых и влажностных условий, ЭМ-
полей и других воздействий для контрольного и опытного контейнеров; б) от типа
подготовки (например совместного замачивания) зёрен, которые используются для контроля
и опыта; в) от вариации всходимости, которая зависит от времени года, взаимодействия
(например электрохимического) между зёрнами при прорастании, качества зернового
материала, и т.д. При использовании термостата и большой величины выборки (количества
зёрен для анализа) мы оцениваем погрешность для а), б) в районе <1,5%. Погрешность для в)
оценить сложно, мы оставляем пока этот вопрос открытым. Случайная погрешность зависит
от количества зёрен, для 200 зёрен случайная погрешность измерения не более 0,5% (см.
больше в [423]).
Для измерения отклика микробиологической системы на воздействие существует
множество биофизических и биохимических тестовых методов. Как правило, эти тесты
направлены на установление степени патогенности окружающей среды, например на
определение комплексной чистоты воды. В нетрадиционных исследованиях стандартным
микробиологическим тестом является измерение биолюминесценции бактерий E.coli [225].
Также широко распространены тесты на оседание эритроцитов, определение двигательной
активности инфузорий спиростом и т.д., см., например, [443].
Биологическим микроорганизмом, который можно найти почти в каждом домашнем
